Plegamiento y desnaturalización
Existen muchos indicios que señalan que la información necesaria para un correcto pleglamiento de una proteína globular está contenida en la estructura primaria, es decir en su secuencia de aminoácidos de dicha proteína. Una proteína debe ser capaz de plegarse correctamente sin más información que la contenida en su secuencia de aminoácidos y las interacciones que se establecen entre ellos.
La estructura tridimensional de una proteína en condiciones fisiológicas se conoce como estructura nativa, y se considera la estructura más estable de todas las estructuras posibles. Además la estructura nativa es la funcionalmente activa. Si cambiamos las condiciones ambientales, la estructura nativa se pierde, este proceso se denomina desnaturalización. Podemos conseguir la desnaturalización de una proteína mediante anumento de la temperatura, cambios drásticos de pH, añadiendo agentes caotrópicos como la urea o el clorhidrato de guanidinio) o mediante disolventes orgánicos como el etanol.
Generalmente las proteínas se desnaturalizan con calor. Bajo condiciones adecuadas un incremento mederado de la temperatura conduce a la perdida de la estrutura secundaria y terciaria de la proteína. Se puede determinar el porcentaje de moléculas desnaturalizadas a una detarminada temperatura por diferente técnicas (espectroscopía UV, viscosidad de la disolución o actividad óptica). Por lo general, la desnaturalización se produce en un intervalo relativamente estrecho de temperatura. Esto indica que es un proceso cooperativo donde la perdida de unas pocas intercciones no covalentes son suficientes para la perdita total de la conformación nativa. La mayoría de la proteínas poseen una temperatura de fusión (Tm, temparatura a la cual el 50% de la proteína se encuentra desnaturalizada) caracteristica a un determinado pH y fuerza iónica.
Desnaturalización de la Ribonucleasa A
Los trabajos de Christian Anfisen con la ribonucleasa A (RNAsa A) apoyan está idea. La RNAsa A es una enzima digestiva que cataliza la hidrólisis de ácidos ribonucléicos. Es relativamente pequeña formada por 124 residuos de aminoácidos y tiene 8 cisteínas que forman 4 puentes disulfuro. Cuando la RNAsa A se desnaturaliza perdiendo su estructura nativa, y por tanto su actividad, es capaz de recuperar su estructura nativa y su actividad en determinadas condiciones. La desnaturalización de la RNAsa A con urea 8 M y B-mercaptoetanol. Reduce los puentes disulfuros de la enzima. Eliminando la urea y el BME, por ejemplo mediante dialisis, la enzima recuperasu plegamiento y se forman lo spuentes disulfuros correctos; la RNAsa A recupera su actividad. Si en cambio solo retiramos el agente reductor. Los puentes disulfuros que se forman no los los correctos y aproximadamente solo el 1% de la enzima es activa (si 8 residuos de cisteína forman puentes disulfuros aleatoriamente, hay 105 posibles combinaciones, 7 para el primer par, 5 para el segundo, tres para el tercero y solo uno para el úiltimo, 7x5x3x1 = 105). Si a esta última preparación se le añaden trazas de BME y se calienta suavemente, los puentes disulfuros incorrectos se rompen formmandose los adecuados.
Consideraciones termodinámicas
La conformación nativa de una proteína es la conformación de más baja energía libre de Gibbs. El proceso de plegamiento, como cualquier otro proceso biológico, se encuentra bajo control termodinámico y cinético, y es un proceso que está claramente favorecido en condiciones fisiológicas. En otras palablas, el proceso de plegamiento hasta alcanzar la estructura nativa presenta un ΔG negativo.
Desde el punto de vista entrópico, el proceso de plegamiento supone una disminución neta de entropía desde la estructura denominada ovillo aleatorio a la única estructura nativa. Este descenso de entropía, denominada entropía conformacional, supone un incremento positivo de energía libre en el proceso de plegamiento (ΔG = ΔH – TΔS). Para poder tener un descenso global en el proceso es necesario que el incremento de entalpía sea negativo o que existan otros aumentos de entropía. La principal contribución entalpica al proceso de plegamiento la constituyen la formación de interacciones no covalentes que estabilizan la estructura nativa y las interacciones hidrofóbicas entre las cadenas laterales apolares que generalmente quedan localizados en el interior de la estructura nativa.
En resumen, la estabilidad de la estructura plegada de una proteína globular depende de la interacción de tres factores:
1. El cambio de entropía conformacional desfavorable, que favorece en su lugar a las cadenas aleatorias.
La entalpía favorable de las cadenas laterales intramoleculares.
2. El cambio de entropía favorable del enterramiento de los grupos hidrófóbicos en el interior de la molécula.
3. La aportación de estos factores varía entre diferentes proteínas (ver tabla), pero la consecuencia es la misma: alguna estructura plagada corresponde con un mínimo de energía libre del polipéptido en condiciones fisiológicas, Éste es el motivo por el que las cadenas polipeptídicas se pliegan espontaneamente.
TABLAAAAAA
La paradoja de Levinthal
El plegado de proteínas globulares a partir de sus conformaciones desnaturalizadas es un proceso notablemente rápido, que se completa en menos de un segundo. Esto puede resultar paradójico tal y como puso de manifiesto Cyrus Levinthal en 1968. Una proteína pequeña como la RNAsa A, que tiene 124 aminoácidos tiene 1050 conformaciones posibles. Si la molécula pudiese probar una configuración cada 10-13 segundos, serían necesarios 1030 años para probarlas todas. Sin embargo, se ha comprobado in vitro que la RNAsa de pliega en aproximadamente 1 minuto.
La salida al dilema de Levilthal podría estar en la selección acumulativa, según la cual los intermediarios parcialmente correctos se retienen. Los sitios de iniciación favorecen la estabilización de estructuras más complejas.
Determinados residuos aparecen preferentemente en determinadas estructura secundarias
Actualmente no se conoce el proceso exacto mediante el cual se produce el plegamiento “de novo” de una proteína. Se admite que este proceso se inicia con interaciones de corto alcance que forman estructuras secundarias en regiones locales del polipéptido. Estas interacciones son interacciones no covalentes que se establecen entre las cadenas laterales próximas. Determinados residuos tienen tendencia a formar estructuras en hélice-alfa, hoja-beta o giros reversos (ver tabla). Estos residuos que se estructuran espontaneamente se conocen como sitios de iniciación.
El siguiente paso es la formación de estructuras parcialmente plegadas que se conocen con el nombre de estado globular fundido. Este estado se produce tras un colapso hidrofóbico, y contiene la mayor parte de las estructuras secundarias presentes en la estructura nativa, pero posee muchas interacciones incorrectas. Este estado se encuentra en rápido equilibrio con el estado de ovillo aleatorio totalmente desnaturalizado. Las interacciones de medio y largo alcance se forman mediante reordenaciones del estado globular fundido. Las últimas interacciones en formarse son los puentes disulfuros.
TABLA 2
TABLA 3
Existen muchos indicios que señalan que la información necesaria para un correcto pleglamiento de una proteína globular está contenida en la estructura primaria, es decir en su secuencia de aminoácidos de dicha proteína. Una proteína debe ser capaz de plegarse correctamente sin más información que la contenida en su secuencia de aminoácidos y las interacciones que se establecen entre ellos.
La estructura tridimensional de una proteína en condiciones fisiológicas se conoce como estructura nativa, y se considera la estructura más estable de todas las estructuras posibles. Además la estructura nativa es la funcionalmente activa. Si cambiamos las condiciones ambientales, la estructura nativa se pierde, este proceso se denomina desnaturalización. Podemos conseguir la desnaturalización de una proteína mediante anumento de la temperatura, cambios drásticos de pH, añadiendo agentes caotrópicos como la urea o el clorhidrato de guanidinio) o mediante disolventes orgánicos como el etanol.
Generalmente las proteínas se desnaturalizan con calor. Bajo condiciones adecuadas un incremento mederado de la temperatura conduce a la perdida de la estrutura secundaria y terciaria de la proteína. Se puede determinar el porcentaje de moléculas desnaturalizadas a una detarminada temperatura por diferente técnicas (espectroscopía UV, viscosidad de la disolución o actividad óptica). Por lo general, la desnaturalización se produce en un intervalo relativamente estrecho de temperatura. Esto indica que es un proceso cooperativo donde la perdida de unas pocas intercciones no covalentes son suficientes para la perdita total de la conformación nativa. La mayoría de la proteínas poseen una temperatura de fusión (Tm, temparatura a la cual el 50% de la proteína se encuentra desnaturalizada) caracteristica a un determinado pH y fuerza iónica.
Desnaturalización de la Ribonucleasa A
Los trabajos de Christian Anfisen con la ribonucleasa A (RNAsa A) apoyan está idea. La RNAsa A es una enzima digestiva que cataliza la hidrólisis de ácidos ribonucléicos. Es relativamente pequeña formada por 124 residuos de aminoácidos y tiene 8 cisteínas que forman 4 puentes disulfuro. Cuando la RNAsa A se desnaturaliza perdiendo su estructura nativa, y por tanto su actividad, es capaz de recuperar su estructura nativa y su actividad en determinadas condiciones. La desnaturalización de la RNAsa A con urea 8 M y B-mercaptoetanol. Reduce los puentes disulfuros de la enzima. Eliminando la urea y el BME, por ejemplo mediante dialisis, la enzima recuperasu plegamiento y se forman lo spuentes disulfuros correctos; la RNAsa A recupera su actividad. Si en cambio solo retiramos el agente reductor. Los puentes disulfuros que se forman no los los correctos y aproximadamente solo el 1% de la enzima es activa (si 8 residuos de cisteína forman puentes disulfuros aleatoriamente, hay 105 posibles combinaciones, 7 para el primer par, 5 para el segundo, tres para el tercero y solo uno para el úiltimo, 7x5x3x1 = 105). Si a esta última preparación se le añaden trazas de BME y se calienta suavemente, los puentes disulfuros incorrectos se rompen formmandose los adecuados.
Consideraciones termodinámicas
La conformación nativa de una proteína es la conformación de más baja energía libre de Gibbs. El proceso de plegamiento, como cualquier otro proceso biológico, se encuentra bajo control termodinámico y cinético, y es un proceso que está claramente favorecido en condiciones fisiológicas. En otras palablas, el proceso de plegamiento hasta alcanzar la estructura nativa presenta un ΔG negativo.
Desde el punto de vista entrópico, el proceso de plegamiento supone una disminución neta de entropía desde la estructura denominada ovillo aleatorio a la única estructura nativa. Este descenso de entropía, denominada entropía conformacional, supone un incremento positivo de energía libre en el proceso de plegamiento (ΔG = ΔH – TΔS). Para poder tener un descenso global en el proceso es necesario que el incremento de entalpía sea negativo o que existan otros aumentos de entropía. La principal contribución entalpica al proceso de plegamiento la constituyen la formación de interacciones no covalentes que estabilizan la estructura nativa y las interacciones hidrofóbicas entre las cadenas laterales apolares que generalmente quedan localizados en el interior de la estructura nativa.
En resumen, la estabilidad de la estructura plegada de una proteína globular depende de la interacción de tres factores:
1. El cambio de entropía conformacional desfavorable, que favorece en su lugar a las cadenas aleatorias.
La entalpía favorable de las cadenas laterales intramoleculares.
2. El cambio de entropía favorable del enterramiento de los grupos hidrófóbicos en el interior de la molécula.
3. La aportación de estos factores varía entre diferentes proteínas (ver tabla), pero la consecuencia es la misma: alguna estructura plagada corresponde con un mínimo de energía libre del polipéptido en condiciones fisiológicas, Éste es el motivo por el que las cadenas polipeptídicas se pliegan espontaneamente.
TABLAAAAAA
La paradoja de Levinthal
El plegado de proteínas globulares a partir de sus conformaciones desnaturalizadas es un proceso notablemente rápido, que se completa en menos de un segundo. Esto puede resultar paradójico tal y como puso de manifiesto Cyrus Levinthal en 1968. Una proteína pequeña como la RNAsa A, que tiene 124 aminoácidos tiene 1050 conformaciones posibles. Si la molécula pudiese probar una configuración cada 10-13 segundos, serían necesarios 1030 años para probarlas todas. Sin embargo, se ha comprobado in vitro que la RNAsa de pliega en aproximadamente 1 minuto.
La salida al dilema de Levilthal podría estar en la selección acumulativa, según la cual los intermediarios parcialmente correctos se retienen. Los sitios de iniciación favorecen la estabilización de estructuras más complejas.
Determinados residuos aparecen preferentemente en determinadas estructura secundarias
Actualmente no se conoce el proceso exacto mediante el cual se produce el plegamiento “de novo” de una proteína. Se admite que este proceso se inicia con interaciones de corto alcance que forman estructuras secundarias en regiones locales del polipéptido. Estas interacciones son interacciones no covalentes que se establecen entre las cadenas laterales próximas. Determinados residuos tienen tendencia a formar estructuras en hélice-alfa, hoja-beta o giros reversos (ver tabla). Estos residuos que se estructuran espontaneamente se conocen como sitios de iniciación.
El siguiente paso es la formación de estructuras parcialmente plegadas que se conocen con el nombre de estado globular fundido. Este estado se produce tras un colapso hidrofóbico, y contiene la mayor parte de las estructuras secundarias presentes en la estructura nativa, pero posee muchas interacciones incorrectas. Este estado se encuentra en rápido equilibrio con el estado de ovillo aleatorio totalmente desnaturalizado. Las interacciones de medio y largo alcance se forman mediante reordenaciones del estado globular fundido. Las últimas interacciones en formarse son los puentes disulfuros.
TABLA 2
TABLA 3
